文章插图
B淋巴细胞与抗体合成有关，是体液免疫反应的效应细胞 。
B细胞表面带有膜表面免疫球蛋白(SmIg)、Fc受体及补体受体等 。
它可与抗原抗体复合物的Fc段牢固结合 。
选用鸡或羊红细胞 ， 用相应的抗红细胞抗体致敏成EA复合物，B细胞的Fc受体能与EA结合形成花环，称EA花环 。
如果EA复合物再加上补体，与B细胞的补体受体结合 ， 则形成EAC花环 。
B细胞表面有鼠RBC受体，能与小鼠RBC结合 ， 形成鼠红细胞花环(M-RFC)，主要结合于带有IgM受体的B细胞上，形成M-RFC的多为幼稚B细胞 。
本试验临床上主要用于检测B淋巴细胞的数量及判断体液免疫水平 。
- 检查部位：免疫系统
- 科室：
- 空腹检查：否
- 禁忌人群：
- 参考价格：
鼠红细胞花环形成试验——检查项目的不适宜人群：
暂无内容鼠红细胞花环形成试验——检查项目的注意细节：
(1)温育时间：ME花环百分率随温育时间延长而逐渐增加，温育1h ， ME百分率为7.4±3.1%，而温育18h，增至18.3±3.8%，温育72h后，花环数又逐渐降至3.4±7.1% 。
(2)培养液：以用Tc199培养液最为适宜 ， 其结果及重复性均好 。用Hepes缓冲的RPMl1640培养液洗涤和重悬淋巴细胞和红细胞，导致细胞趋向聚集，而形成大块细胞，从而产生不可靠的结果 。
(3)红细胞与淋巴细胞的最适比例约为35∶1，比例>60∶1，或比例<25∶1时，ME花环数可减低 。
(4)保存MRBC的培养液：在Alsever液中 ， MRBC4℃保存1周仍可产生稳定的花环数，而在PBS，生理盐水或Tc199培养液中保存的MRBC ， 随着保存时间延长，花环数逐渐下降 ， 保存72h后 ， 只能看到小数花环或无花环形成细胞 。
鼠红细胞花环形成试验——检查项目的一般步骤：
(1)取1ml上述小鼠红细胞悬液，加3ml生理盐水混匀，1500r/min，离心10min，共洗3次，最后用生理盐水配成1%小鼠红细胞悬液(约1.4×108个细胞/ml) 。
(2)取受检者1.5ml肝素抗凝血，用淋巴细胞分层液分离淋巴细胞，用含20%小牛血清Hank液调整细胞浓度为2×107/ml 。
(3)取淋巴细胞悬液0.1ml，加等量1%小鼠红细胞悬液，混合后置37℃水浴10min，500r/min，离心10min ， 放4℃冰箱2～3h 。
【鼠红细胞花环形成试验】(4)用毛细管吸取0.05ml上清液，加1滴2g/L美蓝溶液，轻轻旋转使混匀，取1滴混合物放在玻片上 ， 覆以盖玻片 ， 待细胞下沉后，用高倍镜检查 。
鼠红细胞花环形成试验——检查项目结果解读：
(1)取1ml上述小鼠红细胞悬液，加3ml生理盐水混匀，1500r/min，离心10min，共洗3次，最后用生理盐水配成1%小鼠红细胞悬液(约1.4×108个细胞/ml) 。
(2)取受检者1.5ml肝素抗凝血，用淋巴细胞分层液分离淋巴细胞，用含20%小牛血清Hank液调整细胞浓度为2×107/ml 。
(3)取淋巴细胞悬液0.1ml ， 加等量1%小鼠红细胞悬液，混合后置37℃水浴10min，500r/min ， 离心10min，放4℃冰箱2～3h 。
(4)用毛细管吸取0.05ml上清液，加1滴2g/L美蓝溶液，轻轻旋转使混匀，取1滴混合物放在玻片上，覆以盖玻片，待细胞下沉后 ， 用高倍镜检查 。
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